Библиография

1. 1. http://www.kremlin.ru/acts/bank/50755 (дата обращения 13.02.2025).
2. 2. Поляков В.В. Природоподобные технологии как инновационный ответ на вызовы XXI века // Экономика и экология территориальных образований. 2024. Т. 8 (3). С. 27-33.
3. 3. Zverev A.O., Kimeklis A.K., Orlova O.V. et al. Creation of Cellulolytic Communities of Soil Microorganisms - A Search for Optimal Approaches // Microorganisms 2024, vol. 12, no. 11, 2276.
4. 4. Kimeklis A.K., Gladkov G.V., Orlova O.V. et al. Metagenomic insights into the development of microbial communities of straw and leaf composts // Front Microbiol. 2025, vol. 15, 1485353.
5. 5. Проворов Н.А., Тихонович И.А. Сельскохозяйственная микробиология и симбиогенетика: синтез классических идей и конструирование высокопродуктивных агроценозов (обзор) // Сельскохозяйственная биология. 2022. № 5. С. 821-831.
6. 6. Safronova V.I., Guro P.V., Sazanova A.L. et al. Rhizobial Microsymbionts of Kamchatka Oxytropis Species Possess Genes of the Type III and VI Secretion Systems, Which Can Affect the Development of Symbiosis // Mol. Plant-Microbe Interact. 2020, vol. 33 (10), pp. 1232-1241.
7. 7. Safronova V., Sazanova A., Kuznetsova I. et al. Increasing the Legume-Rhizobia Symbiotic Efficiency Due to the Synergy between Commercial Strains and Strains Isolated from Relict Symbiotic Systems // Agronomy. 2021, vol. 11 (7), 1398.
8. 8. Safronova V., Sazanova A., Belimov A. et al. Synergy between Rhizobial Co-Microsymbionts Leads to an Increase in the Efficiency of Plant-Microbe Interactions // Microorganisms. 2023, vol. 11, 1206.
9. 9. Вавилов Н.И. Центры происхождения культурных растений. Избранные произведения в 2-х т. Ленинград: Наука, 1967. С. 89-202.
10. 10. Кузнецова И.Г., Карлов Д.C., Гуро П.В. и др. Генетическое разнообразие и симбиотическая эффективность клубеньковых микросимбионтов остролодочника таймырского (Oxytropis taimyrensis (Jurtz.) A. et D. Love), астрагала холодного (Astragalus frigidus (L.) A. Gray) и астрагала тугаринова (Astragalus tugarinovii Basil.) из Арктической Якутии // Сельскохозяйственная биология. 2024. № 5. С. 927-942.
11. 11. Kuznetsova I.G., Karlov D.S., Sazanova A.L. et al. Genetic Diversity of Microsymbionts of Legumes Lathyrus pratensis L., Vicia cracca L., Trifolium repens L., and Astragalus schelichowii Turcz. Growing Near Norilsk in Arctic Russia // Russ. J. Plant Physiol. 2023, vol. 70, 187.
12. 12. Костычев С.П. Избранные труды по физиологии и биохимии микроорганизмов. Т. 2. М.: Изд-во АН СССР, 1956. 510 с.
13. 13. Шапошников А.И., Моргунов А., Акин Б. и др. Сравнительные характеристики корневых систем и корневой экссудации синтетического, примитивного и современного сортов пшеницы // Сельскохозяйственная биология. 2016. № 1. С. 58-78.
14. 14. Шапошников А.И., Белимов А.А., Азарова Т.С. и др. Взаимосвязь состава корневых экссудатов и эффективности взаимодействия растений пшеницы с микроорганизмами // Прикладная биохимия и микробиология. 2023. № 3. C. 260-274.
15. 15. Chebotar V.K., Gancheva M.S., Chizhevskaya E.P. et al. Endophyte Bacillus vallismortis BL01 to Control Fungal and Bacterial Phytopathogens of Tomato (Solanum lycopersicum L.) Plants // Horticulturae. 2024, vol. 10 (10), 1095.
16. 16. Tsyganov V.E., Tsyganova A.V. Symbiotic regulatory genes controlling nodule development in Pisum sativum L. // Plants. 2020, vol. 9, no. 12, 1741.
17. 17. Тихонович И.А., Проворов Н.А. Симбиозы растений и микроорганизмов: молекулярная генетика агросистем будущего. СПб.: Издательство Санкт--Петербургского университета, 2009.
18. 18. Bovin A.D., Pavlova O.A., Dolgikh A.V. et al. The role of heterotrimeric G-protein beta subunits during nodulation in Medicago truncatula Gaertn and Pisum sativum L. // Frontiers in Plant Science. 2022, vol. 12, 808573.
19. 19. Прянишников Д.Н. Избранные сочинения. Т. 1. Агрохимия. М.: Колос, 1965.
20. 20. Sulima A.S., Zhukov V.A., Kulaeva O.A. et al. New sources of Sym2A allele in the pea (Pisum sativum L.) carry the unique variant of candidate LysM-RLK gene LykX // PeerJ. 2019, vol. 7, e8070.
21. 21. Sulima A.S., Zhuravlev I.Y., Alexeeva E.A. et al. The Genomic and Phenotypic Characterization of the Sym2A Introgression Line A33. 18 of Pea (Pisum sativum L.) with the Increased Specificity of Root Nodule Symbiosis // Plants. 2025, vol. 14, no. 3, 427.
22. 22. Kuzmina D.O., Zorin E.A., Sulima A.S. et al. Transcriptomic analysis of the symbiotic responsivity trait in pea (Pisum sativum L.) // Vavilov J. Genet. Breed. 2025, vol. 29, no. 2, pp. 248-258.
23. 23. Tvorogova V.E., Fedorova Y.A., Potsenkovskaya E.A. et al. The WUSCHEL-related homeobox transcription factor MtWOX9-1 stimulates somatic embryogenesis in Medicago truncatula // Plant Cell Tiss. Organ Cult. 2019, vol. 138, 517-527.
24. 24. Yakovleva D.V., Efremova E.P., Smirnov K.V. et al. The WOX Genes from the Intermediate Clade: Influence on the Somatic Embryogenesis in Medicago truncatula // Plants. 2024, vol. 13, 223.
25. 25. Gorshkov A.P., Kusakin P.G., Borisov Y.G. et al. Effect of herbicides Sprut Extra (glyphosate) and Forward (quizalofop-P-ethyl) on the development of pea (Pisum sativum L.) symbiotic nodules // Symbiosis. 2024, vol. 94, pp. 191-206.
26. 26. Gorshkov A.P., Kusakin P.G., Vorobiev M.G. et al. Effect of insecticides Imidacloprid and Alpha-Cypermethrin on the development of pea (Pisum sativum L.) nodules // Plants. 2024, vol. 13, no. 23, 3439.
27. 27. Аналитический обзор рынка инокулянтов (2023-2025). https://agroinvestor.ru/analytics
28. 28. Рыночные исследования биопрепаратов в РФ. https://ab-centre.ru/
29. 29. Минсельхоз России. Оперативные данные о посевных площадях в 2024 г. https://mcx.gov.ru
30. 30. Росстат. Посевные площади сельскохозяйственных культур в Российской Федерации на 2024 г. https://rosstat.gov.ru/